C xerosis

C xerosis

Коринебактерии (лат. Corynebacterium ) — род грамположительных палочкообразных бактерий.

Коринебактерии вида Corynebacterium diphtheriae являются возбудителями одной из наиболее известных инфекций человека — дифтерии.

Corynebacterium minutissimum — возбудители эритразмы, хронического псевдомикоза, поражающего эпидермис преимущественно в крупных складках кожи.

В зависимости от биологических особенностей разные виды коринебактерий способны поражать кожу и внутренние органы, особенно у пожилых людей, пациентов с иммуносупрессией или мультиорганной патологией. В случаях инфицирования венозных или брюшных катетеров, нейрохирургических шунтов наблюдается бактериемия. Многие представители коринебактерий становятся причиной эндокардитов, пневмоний, септического артрита и остеомиелита, инфекций при протезировании, заболеваний мочеполовой системы.

Непатогенные виды коринебактерий используются в промышленности для производства аминокислот, нуклеотидов, ферментов, биоконверсии стероидов и производстве сыров. Одним из наиболее изученных видов коринебактерий Corynebacterium glutamicum применяется при биосинтезе глютаминовой кислоты.

Виды Corynebacterium ammoniagenes и Corynebacterium flavescens разрешены СанПиН 2.3.2.2340-08, утвержденным Постановлением Главного государственного санитарного врача РФ 18 февраля 2008 г. № 13, для использования в пищевой промышленности.

Коринебактерии (Corynebacterium) в систематике бактерий

По современной систематике род коринебактерии входит в семейство Corynebacteriaceae. подпорядок Corynebacterineae. порядок Actinomycetales . класс Actinobacteria. тип Actinobacteria. Terrabacteria group. царство Бактерии.

В род коринебактерии входят следующие виды: C. accolens, C. afermentans, C. ammoniagenes, C. amycolatum, C. argentoratense, C. appendicis, C. aquilae, C. auris, C. atypicum, C. aurimucosum, C. auriscanis, C. bovis, C. diphtheriae. C. equi, C. flavescens, C. glucuronolyticum, C. glutamicum, C. granulosum, C. haemolyticum, C. halofytica, C. jeikeium, C. macginleyi, C. matruchotii, C. minutissimum, C. parvum, C. propinquum, C. pseudodiphtheriticum, C. pseudotuberculosis, C. pyogenes, C. urealyticum, C. renale, C. spec, C. striatum, C. tenuis, C. ulcerans, C. urealyticum, C. xerosis.

Большинство видов коринебактерий являются нелиполитическими. Нелиполитические бактерии подразделяются на ферментирующие и неферментирующие:

  • Нелиполитические коринебактерии
    • Ферментирующие коринебактерии:
      • Corynebacterium diphtheriae group
      • Corynebacterium xerosis
      • Corynebacterium striatum
      • Corynebacterium minutissimum
      • Corynebacterium amycolatum
      • Corynebacterium glucuronolyticum
      • Corynebacterium argentoratense
      • Corynebacterium matruchotii
    • Неферментирующие коринебактерии:
      • Corynebacterium afermentans subsp. afermentans
      • Corynebacterium auris
      • Corynebacterium pseudodiphtheriticum
      • Corynebacterium propinquum
  • Липолитические коринебактерии
      • Corynebacterium jeikeium
      • Corynebacterium urealyticum
      • Corynebacterium afermentans subsp. lipophilum
      • Corynebacterium accolens
      • Corynebacterium macginleyi
      • CDC coryneform groups F-1 и G
    Антибиотики, активные в отношении коринебактерий

    Антибактериальные средства (из имеющих описание в данном справочнике), активные в отношении коринебактерий: кларитромицин. азитромицин. Ванкомицин и джозамицин активны в отношении Corynebacterium diphtheriae . Клотримазол и эритромицин — в отношении Corynebacterium minutissimum. Коринебактерии резистентны к ципрофлоксацину .

    http://www.gastroscan.ru

    Возбудитель дифтерии — Corynebacterium diphtheriae и большая группа близких по морфологическим и биохимическим свойствам микроорганизмов рода коринебактерий называют коринеформными бактериями или дифтероидами. Они представлены грамположительными неподвижными палочками, чаще с утолщениями на концах, напоминающими булаву (coryne — булава). Дифтероиды широко распространены в почве, воздухе, пищевых продуктах (молоке). Среди них можно выделить три экологические группы:

    — патогены человека и животных;

    Многие виды дифтероидов являются нормальными обитателями кожи, слизистых зева, носоглотки, глаз, дыхательных путей, уретры и половых органов.

    Дифтерия — острое инфекционное заболевание преимущественно детского возраста, которое характеризуется интоксикацией организма дифтерийным токсином и характерным фибринозным (дифтеритическим) воспалением в месте локализации возбудителя (phther — пленка).

    Морфологические и тинкториальные свойства. C.diphtheriae — тонкие полиморфные палочки с булавовидными концами, часто содержащие волютиновые включения, выявляемые окраской метиленовым синим или по Нейссеру. При последнем палочки окрашены в желто — соломенный цвет, зерна волютина (полиметафосфата) — в темно — коричневый цвет. В культурах палочки находятся под углом друг к другу (особенности деления). образуя различные фигуры — растопыренных пальцев, V, Y, L и т.д. Имеют микрокапсулу, а также фимбрии, облегчающие адгезию к эпителию слизистых оболочек.

    Культуральные свойства. На простых средах коренебактерии дифтерии не растут. Они требуют сред с кровью или сывороткой крови (среды Леффлера, Ру), на которых рост отмечается уже через 10-12 часов, за это время сопутствующая (контаминирующая пробы) микрофлора полностью развиться не успевает.

    Наиболее оптимальны теллуритовая среда и теллурит — шоколадный агар Маклеода. Высокие концентрации теллурита калия в этих средах подавляют рост посторонней флоры. Коринебактерии дифтерии восстанавливают теллурит до металлического теллура, что придает их колониям темно — серый или черный цвет.

    У этого возбудителя выделяют биотипы —gravis,mitis,intermedius, отличающиеся по морфологии, антигенным и биохимическим свойствам, тяжести заболеваний у человека. Тип gravis чаще вызывает вспышки и более тяжелое течение, для него характерны крупные с неровными краями и радиальной исчерченностью колонии в виде маргаритки (R- формы). Тип mitis вызывает преимущественно легкие спорадические заболевания, образует на плотных средах мелкие гладкие колонии с ровными краями (S- формы). Тип intermedius занимает промежуточное положение, образует на плотных средах переходные по характеристикам RS- формы, однако еще более мелкие. На жидких средах вызывают помутнение сред, образуют крошковидный осадок.

    Биохимические свойства. Коринебактерии дифтерии ферментируют глюкозу, мальтозу. Отсутствие активности в отношении сахарозы и мочевины — важный дифференциальный признак среди дифтероидов. Обладают цистеназной активностью (расщепляют цистеин) — проба Пизу.

    Антигенная структура. Выделяют О- и К- антигены. Полисахаридные компоненты О- антигенов клеточной стенки обладают межродовыми свойствами, обусловливая неспецифические перекрестные реакции с микобактериями, актиномицетами (нокардиями).

    Поверхностные К- антигены — капсульные белки, обладают видовой специфичностью и иммуногенностью. Выделяют 11 серотипов. Серотипы 1-5 и 7 относятся к биовару gravis. Серотипирование культур проводят в РА с диагностическими сыворотками к соответствующим сероварам и полигрупповой агглютинирующей сывороткой.

    В серологической диагностике у людей чаще применяют РПГА, более чувствительную, чем РА. В настоящее время применяют также ИФА. Многие штаммы коринебактерий дифтерии (особенно нетоксигенные) обладают спонтанной агглютинабельностью и полиагглютинабельностью.

    Факторы патогенности. Токсигенные штаммы возбудителя дифтерии продуцируют сильный экзотоксин (термолабильный высокотоксичный иммуногенный белок). Нетоксигенные штаммы не вызывают заболевания.

    Токсин вызывает необратимое блокирование удлинения полипептидной цепи, т.е. любого белкового синтеза. Поражаются в основном определенные системы: симпатико — адреналовая, сердце и кровеносные сосуды, периферические нервы. Отмечаются структурные и функциональные нарушения миокарда, демиелинизация нервных волокон, приводящая к параличам и парезам.

    Способность к токсинообразованию проявляют лишь лизогенные штаммы, инфицированные бактериофагом (бета — фагом), несущим ген tox, который кодирует структуру токсина (т.е. несущие гены умеренного профага в своей хромосоме). Фаготипирование применяют для дифференциации штаммов коринебактерий дифтерии.

    Эпидемиология. Резервуар — человек (больной, реконвалесцент, бактерионоситель). Основной путь передачи — воздушно — капельный, сезонность — осенне — зимняя. Возбудитель хорошо сохраняется при низких температурах, высушенном состоянии (слюна, слизь, пыль).

    Клинико — патогенетические особенности. Возбудитель в месте внедрения вызывает фибринозное воспаление с образованием плотно спаянной с тканями фибринозной пленки. Существенное значение в вызываемой патологии имеет действие экзотоксина (описано в разделе “факторы патогенности” ). По локализации выделяют дифтерию ротоглотки (наиболее часто), дыхательных путей, носа и редкой локализации (глаза, наружные половые органы, кожа, раневая поверхность). Дифтерия зева может быть причиной крупа и асфиксии.

    Лабораторная диагностика. Основной метод диагностики — бактериологический. Применяют для выявления больных, бактерионосителей, контактных. Стерильными тампонами берут материал для микроскопии и посевов — слизь из зева и носа, пленки с миндалин и других мест, подозрительных на наличие дифтеритических поражений.

    Возбудитель выделяют посевом на элективные теллуритовые среды и кровяной агар. На слизистой оболочке глаза часто выявляют C.xerosis (возможная причина хронических конъюнктивитов), в носоглотке — C.pseudodiphtheriticum (палочка Хофманна), выявляют и другие дифтероиды.

    Для дифференциации возбудителя дифтерии от дифтероидов используют такие показатели, как способность восстанавливать теллурит и образовывать темные колонии, пробу Пизу, ферментацию углеводов (глюкоза, мальтоза, сахароза) и мочевины, способность расти в анаэробных условиях (характерно для возбудителя дифтерии).

    Обязательным этапом является определение токсигенности культуры. Наиболее распространенные методы — биопробы на морских свинках, реакция преципитации в агаре. Используют также ИФА с антитоксином, генетические зонды и ПЦР для выявления фрагмента А гена tox.

    Лечение. Используют антитоксическую противодифтерийную сыворотку, антибиотики и сульфаниламидные препараты.

    Постинфекционный иммунитет — стойкий, преимущественно антитоксический. Для количественного определения уровня антитоксического иммунитета ранее применялась проба Шика (внутрикожное введение токсина), сейчас — РПГА с эритроцитарным диагностикумом, получаемым сенсибилизацией эритроцитов дифтерийным анатоксином.

    Профилактика. В основе — массовая иммунизация населения. Используют различные препараты, содержащие дифтерийный анатоксин — АКДС, АДС, АДС- М, АД и АД- М.

    Бордетеллы — мелкие коккобациллы, имеют форму овоидной палочки, грамотрицательны, неустойчивы во внешней среде. Основное значение имеют три вида.

    1. B.pertussis — возбудитель коклюша — острого инфекционного заболевания, сопровождающегося воспалением гортани, трахеи и бронхов и приступообразным кашлем.

    2. B.parapertussis — возбудитель паракоклюша.

    3. B.bronchiseptica — возбудитель коклюшеподобного заболевания собак, кошек и кроликов, может вызывать у людей респираторные заболевания по типу ОРВИ (относительно редко).

    Культуральные особенности. Бордетеллы требовательны к средам, особенно возбудитель коклюша. Для первичной изоляции этих гемофильных микроорганизмов используют картофельно — глицериновый агар с добавлением крови (среду Борде — Жангу) или казеиново — угольный агар (КУА). На кровяных средах возбудитель коклюша вызывает образование мелких колоний металлического оттенка с потемнением сред, на КУА — буровато — коричневое окрашивание колоний. Основные формы колоний — гладкие (S) — так называемая Iфаза (вирулентные культуры) через промежуточные формы переходят в шероховатые (R) — фаза IV, что сопровождается изменением культуральных, биохимических и антигенных свойств, потерей вирулентности.

    Антигенный состав. Имеются общие (родовые) и специфические (видовые) антигены. Видоспецифическими являются соматические О- антигены (агглютиногены), выявляемые в РА.

    Факторы патогенности. Главный фактор — термолабильный экзотоксин белковой природы, обладающий тропизмом к нервной и сосудистой системе. Имеется термостабильный эндотоксин. обладающий токсическими и сенсибилизирующими свойствами. Трахеальный цитотоксин вызывает повреждение мерцательного эпителия. Бактерии продуцируют гиалуронидазу, лецитиназу, плазмокоагулазу.

    Эпидемиология. Источник инфекции при коклюше и паракоклюше — больные типичными и стертыми формами инфекции. Механизм заражения — воздушно — капельный. Возбудитель, попавший на слизистую оболочку дыхательных путей, размножается, выделяет экзо- и эндотоксины, некротизирует слизистую, раздражают кашлевые рецепторы и кашлевой центр продолговатого мозга, вызывает спазматические приступы кашля.

    Лабораторная диагностика. Посев проводят методом “кашлевых пластинок” или материал берут заднеглоточным тампоном с посевом на агар Борде — Жангу и КУА. Идентификация выделенных культур проводится по морфологическим и культуральным свойствам, а также в РА со специфическими сыворотками. Для экспресс — диагностики и идентификации применяют метод флюоресцирующих антител.

    Для серологической диагностики используют различные методы — РА, РСК, РПГА с исследованием парных сывороток, взятых в динамике инфекционного процесса.

    Лечение. В основе лечения — антибактериальная терапия антибиотиками (гентамицин, ампициллин и др.).

    Иммунитет и иммунопрофилактика. Постинфекционный иммунитет стойкий, видоспецифический, обусловлен гуморальными и клеточными факторами.

    Для вакцинации используют убитые бордетеллы I фазы. В вакцине АКДС имеется коклюшный компонент (20 млрд микробных тел/ мл).

    Нет сходных материалов(

    http://bsmy.ru

    Микроскопическое исследование исходного материала

    Лабораторная диагностика коринебактериозов

    В настоящее время род Corynebacterium включает порядка 25 видов бакте­рий. Естественной средой обитания коринебактерий являются слизистые и кишечный тракт, некоторые виды обнаруживаются на коже клинически здоровых животных. В патологии животных наибольшее значение имеют нижеследующие виды коринебактерий. C.pseudotuberculosis — вызывает казеозный лимфаденит у овец, коз, лимфангит у крупного рогатого скота, овец. Естественной средой обитания являются слизистые и кишечный тракт, а также кожа клинически здоровых овец. С. renale вызывает пиелонефриты у крупного рогатого скота, баланопоститы у баранов, поражения лимфа­тических узлов у свиней. C.cystitidis и С. pilosum обусловливают пиелонеф­риты крупного рогатого скота. Оба вида обитают в мочеполовом тракте коров. С. renale, С. pilosum, С. cystitidis относят к так называемой «ренальной» группе коринебактерий. С. equi (синоним Rhodococcus equi ) вызывает бронхопневмонию у жеребят 2-4-месячного возраста, цервикальные лим­фадениты у свиней, крупного рогатого скота, обычно этот вид бактерий обнаруживают в фекалиях животных. С. bovis обитает в молочном канале крупного рогатого скота, его роль в патологии неясна. Хорошо известный ранее вид С. pyogenes перенесен в род Actynomyces. Лабораторная диагно­стика коринебактериозов основана на результатах бактериологического исследования.

    Объектом исследования является гной, экссудат, при пневмониях
    (С. equi — R.equi ) — образцы трахеальной слизи, в случаях циститов, нефритов берут пробы мочи.

    Из исследуемого материала готовят мазки, окрашивают по Граму, в слу­чае подозрения на наличие R.equi так же по модифицированному методу Циля—Нильсена. В препаратах, окрашенных по Граму, коринебактерии имеют форму грамположительных палочек с закругленными концами, раз­личной степенью полиморфизма, нередко располагающихся под углом друг к другу; клетки R.equi чаще кокковидные, легко обесцвечиваются и могут окрашиваться как кислотоустойчивые.

    Культивирование. Коринебактерии — факультативные анаэробы, температурный оптимум 37-38° С, рН питательных сред 7,4-7,6. Для выделения патогенных ко­ринебактерии используют кровяной, сывороточный (5%) МПА, МПБ, бу­льон и агар Хоттингера, кровяную теллуритовую среду, среду Леффлера. Контаминированный материал для подавления роста грамотрицательных бактерий засевают на агар Мак-Конки. Посевы инкубируют в условиях обычной атмосферы 24-48 часов.

    Особенности роста коринебактерии на питательных средах. С.pseudotuberculosis на кровяном агаре через сутки инкубирования фор­мирует желто-белые или белые с матовой поверхностью, непрозрачные ко­лонии диаметром около 1 мм. Через 48-72 часа культивирования проявля­ется узкая зона гемолиза (у большинства штаммов). При длительном инку­бировании размер колоний может достигать 3 мм, они приобретают корич­неватый цвет и крошковидный характер.

    На среде Леффлера возбудитель растет в виде крошковатого с желтым оттенком налета, без разжижения сыворотки. На кровяной теллуритовой среде колонии мелкие, слабовыпуклые, с матовой поверхностью, черного цвета. В питательном бульоне возбудитель растет без или с равномерным помутнением среды, с появлением небольшой пленки и осадка.

    C.renale через 24 часа инкубирования образует мелкие, негемолитичес­кие колонии, с возрастом превращающиеся в непрозрачные, белые. C.pilosum образует колонии, сходные с колониями C.renale. приобретаю­щие с возрастом цвет от желтого до коричневого. C.cystitidis формирует колонии как и C.renale. но обычно белого цвета. C.equi (R.equi ) через 24 часа выращивания посевов образует мелкие, гладкие, блестящие колонии, негемолитические. В более старых культурах колонии желтовато-розово­го цвета.

    Морфология клеток коринебактерии в культуре. Из подозрительных колоний готовят и микроскопируют мазки, окрашен­ные по Граму. Клетки коринебактерии в мазках из колоний по морфологии и тинкториальным свойствам в основном не отличаются от таковых в пре­паратах из исходного материала.

    Идентификация коринебактерии на уровне рода. Культуры бактерий, сходные по морфологическим, тинкториальным, культуральным свойствам с коринебактериями, отвивают на питательные среды и исследуют с целью идентификации. Для идентификации на родо­вом уровне принимают во внимание происхождение материала, тинктори-альные особенности (быстрота обесцвечивания при окраске по Граму), мор­фологию клеток, отношение к кислороду, подвижность, каталазную ак­тивность.

    Идентификация коринебактерии на уровне вида. Выделенные культуры на последующем этапе дифференцируют на виды путем изучения гемолитической активности на кровяном агаре, фермента­тивных свойств: гидролиз эскулина, редукция нитратов, разжижение жела­тины, образование уреазы, образование кислоты без газа из глюкозы, маль­тозы, сахарозы (табл. 61).

    С целью дифференциации коринебактерии «ренальной» группы допол­нительно изучают скорость формирования колоний, цвет, рост при рН 5,4 (в бульоне), редукцию нитратов, разжижение желатина, гидролиз твина-80, образование кислоты из ксилозы, крахмала (табл. 62).

    С целью уточнения видовой принадлежности выделенной культуры ко­ринебактерии число изучаемых признаков может быть в случае необходи­мости расширено (табл. 63).

    http://studopedia.ru



    Источник: healthwill.ru


    Добавить комментарий